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          成脂誘導

          實驗操作流程: 

          成骨誘導培養液配備與誘導操作: 

          1、準備含10%FBS的α-MEM培養液; 

          2、在備好的α-MEM培養液中添加50μM 抗壞血酸, 10mmβ-磷酸甘油和100nm地塞米松; 

          3、準備6孔培養板,將P4細胞按照5×103個/平方厘米的規格接種于原始α-MEM培養液中; 

          4、待細胞長至基本融合后,更換上述制備完成的成骨誘導培養液; 

          5、每三天換液一次,細胞長至7天時進行堿性磷酸酶染色; 

          6、二十八天后再進行礦化結節的茜素紅染色。 

          素紅染色方法介紹: 

          1、去除細胞當前使用培養液,使用PBS清洗兩次; 

          2、使用10%甲醛室溫固定15分鐘,完成后使用重蒸餾水沖洗兩次; 

          3、按照1ml/孔加入40mM的茜素紅染色液,室溫孵育20min并輕微振蕩; 

          4、清除掉沒有完全結合的染料,用重蒸餾水漂洗并振蕩5min重復4次; 

          5、傾斜放置2min,吸取多余的重蒸餾水;倒置顯微鏡觀察拍照記錄。 

          成脂誘導培養液配備與誘導操作: 

          1、配置FBS10%含量的HG-DMEM培養液; 

          2、在配制完成的HG-DMEM培養液中加入1μM地塞米松,10μg/ml胰島素,200μM吲哚美辛和0.5mM IBMX; 

          3、準備6孔培養板,將P4細胞按照2×104個/平方厘米的規格接種于原始HG-DMEM培養液中 

          4、待細胞長至基本融合后,更換上述制備完成的成脂誘導培養液培養2天,在用只含有10μg/ml胰島素的成脂維持培養液培 養1天,如此交替循環培養至14天,使用紅油O染色。 紅油O染色方法介紹: 1、去除細胞使用的當前培養液,使用PBS清洗兩次; 

          2、27.5%甲醛室溫固定20分鐘; 

          3、重蒸餾水清洗3此,空氣中干燥; 

          4、加入0.5%的紅油室溫孵育一小時; 

          5、配制70%乙醇溶液清洗3次; 

          6、倒置顯微鏡觀察拍照記錄。 

          客戶提供: 細胞種類和誘導分化細胞類型。 

          交付標準: 

          1、成功定向誘導分化的細胞。

          2、完整項目報告(材料、試劑、儀器、方法、數據分析、實驗結果)。 

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